蛋白質是生命的物質基礎，沒有蛋白質就沒有生命。蛋白質主要用于維持、生長、妊娠和泌乳等需要。因此蛋白質含量的檢測成為一項日常性且必需性的工作。蛋白質含量測定的方法有微量凱氏定氮法、雙縮脲法、folin―酚試劑法、考馬斯亮蘭法、紫外吸收法等。接下來遠慕生物帶你一一了解。

蛋白質含量測定的幾種方法

1.紫外分光光度法

蛋白質分子中存在含有共軛雙鍵的酪氨an酸和色氨an酸，使蛋白質對280nm的光波具有最大吸收值，在一定的范圍內，蛋白質溶液的吸光值與其濃度成正比，可作定量測定。該法操作簡單、快捷，并且測定的樣品可以回收，低濃度鹽類不干擾測定結果，故在蛋白質和酶的生化制備中廣泛被采用。但此方法存在以下缺點：

1.當待測的蛋白質中酪氨an酸和色氨an酸殘基含量差別較大會產生一定的誤差，故該法適用于測定與標準蛋白質氨基酸組成相似的樣品。

2.若樣品中含有其他在280nm吸收的物質如核酸等化合物，就會出現較大的干擾。但核酸的吸收高峰在260nm，因此分別測定280nm和260nm兩處的光吸收值，通過計算可以適當的消除核酸對于測定蛋白質濃度的干擾作用。但因為不同的蛋白質和核酸的紫外吸收是不同的，雖經校正，測定結果還存在著一定的誤差。

2.Bradford法

1976年Bradford建立了用考馬斯亮藍G-250與蛋白質結合的原理，是一種能夠迅速并且準確的定量蛋白質的方法。染料與蛋白質結合后引起染料最大吸收光的改變，從465nm變?yōu)?95nm。蛋白質-染料復合物具有高的消光系數，因此大大提高了蛋白質測定的靈敏度(最di檢出量為1μg)。染料與蛋白質的結合是很迅速的過程，大約只需2min，結合物的顏色在1h內是穩(wěn)定的。一些陽離子(如K+，Na+，Mg2+、)、(NH4)2SO4、乙醇等物質不干擾測定，而大量的去污劑如TritonX-100，SDS等嚴重干擾測定，少量的去污劑可通過用適當的對照而消除。由于染色法簡單迅速，干擾物質少，靈敏度高，現已廣泛用于蛋白質含量的測定。

總氮量的測定——微量凱氏定氮法：當被測定的含氮有機物與濃硫酸共熱消化時，分解出氮、二氧化碳和水，其中氮與硫酸化合成硫酸銨。由于分解反應進行得很慢，故可加入硫酸銅和硫酸鉀或硫酸鈉，其中硫酸銅為催化劑，硫酸鉀或硫酸鈉可提高消化液的沸點，氧化劑(過氧化氫)也能加速反應。

消化終止后，在凱氏定氮儀中加入強堿堿化消化液，使硫酸氨分解放出氨;用水蒸氣蒸餾，將氨蒸入過量的標準無機酸溶液中，全部蒸完之后，用標準的鹽酸溶液滴定收集的氨量，準確測定氨量，從而折算出蛋白質含量。

3.雙縮脲法

具有兩個或兩個以上肽鍵的化合物皆有雙縮脲反應，蛋白質在堿性溶液中能與Cu2+絡合呈紫紅色，顏色深淺與蛋白質濃度成正比，故可用比色法進行測定，根據標準曲線進行計算可以確定蛋白質濃度。

4.Folin-酚試劑法

測定蛋白質含量的經典方法，它是在雙縮脲法的基礎上發(fā)展而來的。它操作簡單、迅速、靈敏度高，較雙縮脲法靈敏100倍。Folin-酚法所用的試劑由兩部分組成，試劑A相當于雙縮脲試劑。蛋白質中的肽鍵與試劑A中的堿性硫酸銅反應形成銅-蛋白質復合物。這個復合物可與試劑B中磷鉬酸-磷鎢酸發(fā)生氧化還原反應。由于磷鉬酸與磷鎢酸易被酚類化合物還原而呈藍色反應。而蛋白質中的酪氨an酸和色氨an酸均可發(fā)生此呈色反應。顏色的深淺與蛋白質的濃度成正比。故可用比色法測定蛋白質的含量。

此法易受蛋白質樣品中酚類化合物及檸檬酸的干擾。另外，試劑B中的磷鉬酸-磷鎢酸僅在酸性pH值時穩(wěn)定，故在將試劑B加入到堿性的銅-蛋白質溶液時，必須立即混合均勻。以確保還原反應能正常發(fā)生。此法也適用與酪氨an酸和色an酸的定量測定。

5.微量凱氏定氮法

含氮有機物即分解產生氨（消化），氨又與硫酸作用，變成硫酸銨。經強堿堿化使之分解放出氨，借蒸汽將氨蒸至酸液中，根據此酸液被中和的程度可計算得樣品之氮含量。

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