平均有約15~35%細(xì)胞實驗室發(fā)生支原體污染（65~80%嚴(yán)重污染），超過一半實驗室有兩種支原體污染；而各地的細(xì)胞庫中，也有發(fā)現(xiàn)5~35%不等的支原體感染率，日本甚至高達60%。
但！目前有在做常規(guī)支原體監(jiān)控的細(xì)胞實驗室卻不到50%！
支原體為細(xì)菌的一類，zui早在1898年由法國 E. Nocard 及 E.R.Roux 從肺疫牛隻中分離出來，1956年才正式命名為支原體 (Mycoplasma)；支原體大小介于細(xì)菌與病毒之間 (直徑介于0.15-0.3?m)，為目前發(fā)現(xiàn)zui小zui簡單的原核微生物，唯1可見的胞器是核糖體，沒有細(xì)胞壁，只有三層結(jié)構(gòu)的細(xì)胞膜，所以呈高度多形性，有球形、桿形、絲狀，分枝狀等多種態(tài) 。
大多支原體基因組只有0.58－1.38百萬堿基，這使得它的生物合成能力薄弱，必須利用本身細(xì)胞膜表面高密度的黏附素附著于宿主細(xì)胞表面，并交換宿主的細(xì)胞質(zhì)及細(xì)胞膜成分，來獲取增殖需要的物質(zhì)。但由于支原體生長條件復(fù)雜，使得菌體培養(yǎng)困難重重，導(dǎo)致過去支原體一直不受關(guān)注；近幾年，拜分子生物學(xué)與基因組學(xué)的進步所賜，基因構(gòu)造簡單的支原體已引起了較為廣大注意。
至今，共有超過180種支原體被發(fā)現(xiàn)，有超過20種能感染體外培養(yǎng)的細(xì)胞，而目前實驗室zui常見(95% 以上)的支原體則來自其中6種：
源自于實驗人員鼻腔、口腔，并經(jīng)由飛沫傳至培養(yǎng)細(xì)胞中的口腔支原體（M.orale）、豬鼻支原體（M.fermentans）及人型支原體（M.hominis），居于*（占總體的50%以上）。
其次則為大多來自牛血清的精氨酸支原體（M. Arginini）、萊氏無膽甾支原體（A. Laidlawii）、及來自豬源胰酶的豬鼻支原體（M. Hyorhinis）。
PS：BI胰酶經(jīng)過輻照，不含活的支原體。
既然支原體是細(xì)菌的一種，抗生素一加不就好了嗎?
為什么可以搞到這么多細(xì)胞庫污染?
支原體體積非常小, 極易通過0.22um濾膜, 且一般光學(xué)顯微鏡無法觀察到。
支原體能附著并存活在器物表面(操作臺, 培養(yǎng)箱,顯微鏡等), 提高操作污染概率。
支原體生長緩慢，通常不破壞宿主細(xì)胞但默默改變了細(xì)胞生長代謝，且對傳統(tǒng)抗生素具抗性，因為抗生素大多破壞細(xì)菌細(xì)胞壁, 而支原體恰恰沒有細(xì)胞壁。
支原體污染初期, 培養(yǎng)基不變色, 細(xì)胞形態(tài)正常，但等大量污染時, 為時已晚, 耗時又耗力。
你說，支原體煩不煩！
目前檢測方法可大致分成四種：
■微生物培養(yǎng)法
將樣品培養(yǎng)在特殊瓊脂培養(yǎng)基上，在37?C有氧環(huán)境中孵育2周，陽性培養(yǎng)基上會長出100~400um大小的“煎蛋狀”菌落。
■DNA螢光染色法
支原體DNA中A-T含量占多數(shù)（55～80%），容易被Hoechst 33258此熒光劑染上，被支原體污染之細(xì)胞經(jīng)染色后，在細(xì)胞核外與細(xì)胞周圍可看到許多大小均一之螢光小點。
■ELISA法
將支原體16S核糖體RNA標(biāo)上標(biāo)簽，然后用特定抗體預(yù)包被過的微孔板對標(biāo)簽進行捕獲，再加入顯色用的抗體及底物，zui后通過比色法得出檢測結(jié)果。
■PCR法
原理為擴增支原體16S核糖體RNA的基因，能檢測多達19種支原體，操作快速、準(zhǔn)確性高，市面上有多款相關(guān)產(chǎn)品可參考
消滅支原體依不同處理發(fā)法，分成四大類：
■物理法：高溫高壓滅菌
■免疫法：使用支原體特異性抗血清、裸鼠傳代法
■化學(xué)法：界面活性劑處理（BI：Pharmacidal 支原體噴壺）
■生化法：使用抗生素等藥物（BI：BIOMYC 支原體處理試劑）
目前，大環(huán)內(nèi)酯（Macrolides）、四環(huán)素（Tetracyclines）和喹諾酮（Quinolones）這三類抗生素，是*對抗支原體效果*的藥物，而市面上有許多針對不同菌株配置的抗生素產(chǎn)品可以參考。
